J'ai trouvé et collecté des Glyphium cf. elatum (Pyrénomycètes) en quantité importante, sur Corylus avellana je pense.
Et aussi des Merismodes cf. anomalus (Cyphelles : oups, sorry:q), également sur troncs morts couchés de noisetier.
J'ai aussi peut-être du côté Nectria sp. ou Myxomycètes, sur même support : là je sèche.

Comme une bonne part d'entre vous sans doute, je suis hobbyiste du dimanche, et mes moyens sont ma fois bien limités.
Je suppose que pour l'observation / le contraste, je peux utiliser les mountants classiques : KOH, Rouge congo ammoniacal, Bleu cotton lactique, Fuchsine, Melzer.

Mais comment obtenir des spores et / ou conidies, des asques ou basides, svp ?
Comment préparer, prétraiter, préprocesser ces organismes pour obtenir leurs spores s.l et leurs cellules reproductrices, sans casser de lame couvre objets ?
Quel est le mode opératoire amateur svp ?

Déjà merci de votre réponse

Hans-Otto Baral, 10-06-2022 20:33

Re : Demande d'aide à la microscopie

Bonsoir

at first you must know that KOH kills the cells immediately. KOH is used by herbarium taxonomists who are used to study dead fungi, and for comparison they also kill their fresh sample, believing that this is the best method.

If you prefer to study living fungi, use simple tap water and do not apply any stain. Don't press on the cover slip biut try to make a preparation that makes pressure unnecessary (e.g. break the perithecium of your Glyphium with a needle or a razor blade and remove thick peridium fragments from the mount).

This method offers the chance that ascospores are forcibly ejected while you are viewing. I can mainly speak about Helotiales, where you even must hurry when photographing or drawing a living ascus before it ejects its spores.  This methos has various advantages, e.g., you can much better define maturity of spores, about which high controversy exists.

Zotto